Manual para el Uso de Insecticidas Convencionales y Alternativos ...

Manual para el Uso de Insecticidas Convencionales y Alternativos en el Manejo de Diaphorina citri Kuwayama en Cítricos, en México

Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias

Centro de Investigación Regional del Noroeste Campo Experimental Valle del Fuerte Juan José Ríos, Sinaloa, México, Mayo 2013 Folleto Técnico Núm. 36 ISBN: 978-607-37-0016-0

Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación Lic. Enrique Martínez y Martínez Secretario

Lic. Jesús Aguilar Padilla Subsecretario de Agricultura

Prof. Arturo Osornio Sánchez Subsecretario de Desarrollo Rural

Lic. Ricardo Aguilar Castillo Subsecretario de Alimentación y Competitividad

Lic. Marcos Bucio Mujica Oficial mayor

Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Dr. Pedro Brajcich Gallegos Director General

Dr. Salvador Fernández Rivera Coordinador de Investigación, Innovación y Vinculación

M.Sc. Arturo Cruz Vázquez Coordinador de Planeación y Desarrollo

Lic. Marcial A. García Morteo Coordinador de Administración y Sistemas

Centro de Investigación Regional del Noreste Dr. Erasmo Valenzuela Cornejo Director Regional

M.C. Arturo Samaniego Russo Director de Investigación

Dr. Jesús Arnulfo Márquez Cervantes Director de Planeación y Desarrollo

Lic. José Silva Constantino Director de Administración

M.C. Jesús Pérez Márquez Director de Coordinación y Vinculación en el estado de Sinaloa

Campo Experimental Valle del Fuerte M.C. Alberto Borbón Gracia Jefe de Campo

Manual para el Uso de Insecticidas Convencionales y Alternativos en el Manejo de Diaphorina citri Kuwayama en Cítricos, en México 1

Dr. Edgardo CORTEZ MONDACA . Dr. Jesús LOERA GALLARDO2. Dr. Luis M. HERNÁNDEZ FUENTES3. Dr. Juan F. BARRERA GAYTAN4. M.C. Ana A. FONTES PUEBLA5. M.C. Ulises DÍAZ ZORRILLA6. Dr. Juan JASSO ARGUMEDO7. Dr. Marco A. REYES ROSAS8. M.C. Miguel Á. MANZANILLA RAMÍREZ9. Dr. J. Isabel LÓPEZ ARROYO10. 1

Investigador del INIFAP-CIRNO-Campo Experimental (CE) Valle del Fuerte. 2y8 Investigadores del INIFAP-CIRNE-CE Río Bravo. 3 Investigador del INIFAP-CIRPAC-CE Santiago Ixcuintla. 4 Investigador del Colegio de la Frontera Sur (ECOSUR). Tapachula, Chiapas. 5 Investigador del INIFAP-CIRNO-CE Costa de Hermosillo 6 Investigador del INIFAP-CIRGOC-CE Ixtacuaco. 7 Investigador del INIFAP-CIRSE-CE Mocochá. 9 Investigador del INIFAP-CIRPAC-CE Tecomán. 10 Investigador del INIFAP-CIRNE-CE General Terán.

INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRÍCOLAS Y PECUARIAS CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL DEL NOROESTE CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL FUERTE

JUAN JOSÉ RÍOS, SINALOA, MÉXICO. FOLLETO TÉCNICO No. 36. MAYO DE 2013

Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Progreso No. 5, Barrio de Santa Catarina Delegación Coyoacán, C.P. 04010 México D. F. Teléfono (55) 3871-8700

ISBN:978-607-37-0016-0 Primera Edición: 2013

Esta obra se terminó de imprimir en mayo de 2013, en City Pixel, Sierra Tarahumara No. 911, Las Puentes 10 S., San Nicolás de los Garza, N. L. CP. 66460. Tel. (81) 8351-4923. Su tiraje fue de 1000 ejemplares. No está permitida la reproducción total o parcial de esta publicación, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier medio, ya sea electrónico, mecánico, fotocopia, por registro u otros métodos, sin el permiso previo y por escrito del Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias.

Manual para el Uso de Insecticidas Convencionales y Alternativos en el Manejo de Diaphorina citri Kuwayama en Cítricos, en México

Introducción…………………………………………….... Importancia de Diaphorina citri…………..…………..... Biología y Ecología....................................................... Fases de desarrollo del PAC….………………............ Ninfas y adultos. ……..…………………………........... Infestación……..……………………………………..... Distribución Espacial y Temporal................................ Daños………..…………………………………………….. Muestreo…….…………………………………………...... Tamaño de Muestra………………………………….... Técnicas de Muestreo….……………………………… Conteo de huevos, ninfas y adultos en brotes........ Conteo de adultos capturados en trampas……..... Conteo de adultos mediante golpeteo de ramas… Criterios de Decisión….…………………….…………... Decisiones basadas en brotes poblacionales……..... Decisiones basadas en umbrales de acción…..…….. Manejo de Diaphorina citri con Insecticidas Alternativos, en Huertas Orgánicas y en Áreas Urbanas......................................................................... Grupos de insecticidas alternativos para sistemas de producción orgánica……….……………………..... Consideraciones sobre el uso de insecticidas alternativos………………………............ Plan de Rotación de Insecticidas Alternativos…........ Manejo de Diaphorina citri con Insecticidas Convencionales………………….…………………….....

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Página Grupos de insecticidas convencionales para el control de Diaphorina citri….…….……........... Insecticidas autorizados en México para el control de Diaphorina citri………............................ Insecticidas recomendados contra el PAC en Estados Unidos de América ……………………….. Manejo de la Resistencia de Diaphorina citri a Insecticidas………………….……….…………............ Rotación de Insecticidas para el Manejo de la Resistencia del PAC en Áreas Regionales de Control (ARCOs)…….………………………….......... Tipos de Resistencia………………...………………… Mecanismos que Confieren la Resistencia.…………. Criterios para el uso de mezclas de insecticidas…….. Plan de rotación de insecticidas convencionales con base en su mecanismo de acción…….................. Recomendaciones para el Uso apropiado de Agroquímicos…………………………………………….. Calibración de Equipo de Aspersión………………….. Dosificación de Insecticidas de Acuerdo al Tamaño de Árboles……………………………......... Técnicas de Aplicación….…………………………….. La seguridad en el uso de plaguicidas…………..…… Agradecimientos.......................................................... Literatura Citada…………………………………………..

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Introducción El Huanglongbing (HLB), enfermedad producida por la bacteria Candidatus Liberibacter spp., y trasmitida en el continente americano por el psílido Asiático de los cítricos (PAC) Diaphorina citri Kuwayama (Fig. 1), es reconocida actualmente como la enfermedad más devastadora de los cítricos, a nivel mundial. Los esfuerzos realizados por productores, asesores técnicos, investigadores, dependencias de sanidad vegetal con el apoyo del gobierno en el ámbito internacional, nacional y regional han rendido frutos, sin embargo, el HLB continúa su avance. En México, desde julio de 2009 y hasta la fecha, la bacteria se ha detectado en 17 estados y en 11 la enfermedad (SENASICA, 2012).

Figura 1. Adulto de Diaphorina citri Kuwayama

De acuerdo a lo anterior, es urgente hacer más eficientes las actividades estratégicas para el manejo del HLB mediante: Eliminación de árboles infectados (Fig. 2).

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Producción de planta sana en ambiente protegido. Control estricto del insecto vector. Los criterios de decisión, planeación e implementación, para el manejo de las poblaciones del PAC, en México se han definido bajo ciertas condiciones como: el escaso número de ingredientes activos autorizados para su empleo en cítricos; el efecto del surgimiento de otras plagas insectiles, derivado del uso intensivo de estos plaguicidas en diferentes regiones que causan la eliminación de los enemigos naturales; el riesgo de selección de resistencia a insecticidas o acaricidas por el PAC y otros insectos, y ácaros presentes en las huertas; el riesgo de contaminación de la fruta que se cosecha con límites máximos de residuos no permitidos de un determinado insecticida; además de otros consabidos problemas derivados de la contaminación.

Figura 2. Apariencia de árbol infectado por el HLB

El presente manual se elaboró para presentar las técnicas de muestreo y los criterios de decisión para aplicar los insecticidas autorizados en México para el control de D. citri en cítricos, en

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huertos convencionales, de producción orgánica y en áreas urbanas. Se indican los insecticidas efectivos, convencionales y alternativos, dosis, intervalos de seguridad a la cosecha, calibración de equipos, y la estrategia para el manejo de la resistencia del PAC en áreas regionales de control (ARCO´s). Importancia de Diaphorina citri El PAC como fitófago plaga causa daño a los brotes de los cítricos y llega a eliminarlos, pero su mayor importancia es debida a su papel como vector del patógeno que causa el HLB. Esta bacteria también se puede transmitir por material vegetativo (injerto, desplazamiento de plantas infectadas entre diferentes regiones y posiblemente por semilla), así como a través de la planta parásita “Cuscuta” Cuscuta pentagona Engelm. (Solanales: Convolvulaceae) (Duan et al., 2008), aunque la forma más frecuente de transmisión es por el PAC, clasificado como plaga con categoría cuarentenaria (OEPP/EPPO, 1988). Biología y Ecología de Diaphorina citri Fases de desarrollo del PAC. Presenta la fase de huevo (Fig. 3), cinco instares ninfales y el adulto; bajo temperaturas de 24 °C los huevos eclosionan entre 4.1 y 4.3 días, y sus cinco instares pueden tener una duración de 12.6 a 13.5 días, dependiendo del hospedero (Liu y Tsai, 2000). La mayor longevidad de las hembras criadas en toronja es de 54 días a 25 °C; bajo condiciones de laboratorio, el desarrollo de huevo a adulto requirió 250 unidades calor (UC), con un umbral de desarrollo de 10.45 °C (Liu y Tsai, 2000), o 211 UC con un umbral de 13.53 °C (Torres y Parra, 2008) En el centro de Sinaloa, el desarrollo del PAC de huevo a adulto varió de 12 a 48 d. Entre Mayo y Octubre, el periodo más caluroso del año, se registran 12

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generaciones en promedio; en esta época el ciclo de vida completo transcurrió en 13.5 d en promedio; es posible registrar entre 18 y 19 generaciones del PAC al año (Cortez et al. 2010).

Figura 3. Huevos de D. citri

Ninfas y adultos. Las ninfas del PAC (Fig. 4) excretan mielecilla, con la cual se propicia el desarrollo de hongos causantes de fumagina, y se origina la presencia de hormigas, atraídas para utilizarla como fuente de alimento (CABI, 2005); característicamente también excretan pequeños gránulos de cera, semejantes a granos de sal, llegándose a observar como filamentos o espirales largos que salen del extremo abdominal (Halbert, 1999; Halbert y Manjunath, 2004), cuando el insecto se está alimentando activamente (Fig. 5). Los adultos generalmente se encuentran en reposo en la porción terminal de las ramas o brotes de las plantas, especialmente en el envés de las hojas, y adoptan una característica posición, con la cabeza prácticamente pegada al sustrato y la punta del abdomen hacia arriba en un ángulo de 30° aproximadamente (Fig. 6); cuando son molestados vuelan ligeramente una corta distancia y se posan de nuevo en el follaje.

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Figura 4. Brote infestado por ninfas de D. citri.

Figura 5. Excreción de cera por ninfas de D. citri

Figura 6. Posición característica de adultos de D. citri.

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Infestación. El PAC posee un ciclo de vida corto y una alta capacidad de reproducción, especialmente en áreas costeras calurosas (Catling, 1970). Liu y Tsai (2000) indican que la mayor cantidad de huevos se presentaron en toronja y que las hembras sólo ovipositan en ramas tiernas y en ausencia de éstas, cesan la oviposición temporalmente. En el norte de Sinaloa el limón mexicano, la toronja y la naranja fueron más infestados, mientras que en el centro del estado el orden de preferencia fue naranja, toronja y limón fino italiano, y en ambos sitios la mandarina fue la especie menos preferida, aunque en algunos casos no se observó diferencia significativa entre especies de cítricos, además, la capacidad de brotación de las diferentes especies de cítricos no mostró una relación directamente proporcional con la abundancia del insecto, al parecer existe otro factor involucrado Cortez et al. (2011). Otras observaciones registraron que la preferencia fue mayor para naranja, y en seguida por tangelo, toronja y limón mexicano; mientras que la de menor preferencia fue la mandarina (Pacheco y Samaniego, 2011). Distribución Espacial y Temporal El incremento de las poblaciones del PAC está relacionado con los periodos brotación de los cítricos, coincidiendo con ellos la ocurrencia de las mayores densidades (Cortez-Mondaca et al., 2010; OrtegaArenas et al., 2011; Pacheco-Covarrubias y Samaniego-Ruso, 2011; Urías-López et al., 2011; Velázquez-Monreal et al., 2011); sin embargo, la densidad media por brote ha resultado un indicador inconsistente de los niveles generales de la población del PAC, en diferentes sitios, observándose que, en ocasiones, con presencia de pocos brotes tiernos se registran poblaciones elevadas (Hall et al. 2008; Cabrera-Mireles et al. 2011; Cortez-Mondaca et al. 2010).

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Moreno et al., (2008), señalan que la temperatura media y la humedad relativa no presentaron una correlación significativa con la población del PAC, mientras que las precipitaciones influyeron causando una disminución de la población del insecto. En el estrato medio de las plantas y el cuadrante norte del campo se registraron los mayores porcentajes de brotes afectados, mientras que el estrato bajo y el cuadrante oeste fueron los menos afectados. El 51.2% de los huevos se encontraron en el estrato medio del cuadrante norte de la planta seguido del estrato alto (34,69%) del mismo cuadrante. Daños En infestaciones altas, el PAC puede eliminar los brotes vegetativos (Fig. 7) en desarrollo o causar la abscisión de hojas (Michaud, 2004). El daño es causado por ninfas y adultos al extraer grandes cantidades de savia de las hojas y pecíolos, e inyectar toxinas, induciendo el enrollamiento de las mismas, e impidiendo el crecimiento normal de la planta (Figs, 8, 9 y 10).

Figura 7. Brotes dañados por Diaphorina citri

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Figura 8. Hojas de limón mexicano con síntomas de HLB

Figura 9. Hojas afectadas por la alimentación de D. citri

Figura 10. Fruto de árbol infectado por el HLB, mostrando la coloración inversa de maduración

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En limón Mexicano, se reportó mayor daño en las hojas de la base de un brote y mínimo en las hojas de la parte superior del mismo; se alteró la dinámica de emisión de nuevos brotes vegetativos y de racimos florales, pero el rendimiento no resultó afectado (Robles et al., 2010). Alemán et al. (2007), mencionan que una sola ninfa alimentándose por menos de 24 horas es capaz de provocar una malformación de la hoja joven o madura. Los árboles maduros suelen tolerar los daños directos de la plaga, porque la pérdida de hojas es mínima en comparación con el tamaño de su copa (Pacheco et al., 2012). En los árboles infectados los frutos se deforman completamente y resultan inaceptables en el mercado (da Graca, 1991; da Graca y Korsten, 2004; Halbert y Manjunath, 2004). Muestreo A continuación se describen métodos de muestreo de ninfas y adultos y criterios de decisión para hacer un uso racional de insecticidas en el manejo del PAC. En regiones citrícolas, las huertas a muestrear deben ser caracterizadas por especie, variedad, edad, tamaño y altitud del predio, nombre del propietario, nivel de tecnificación y cultivos colindantes o intercalados, entre otros aspectos relacionados con el manejo y las condiciones ambientales, para generar información que pueda servir de apoyo en el seguimiento de la presencia de infestaciones del PAC. Tamaño de Muestra En cada huerta de hasta cinco ha se deben seleccionar 20 árboles y numerarlos de manera progresiva, tratando de que queden distribuidos en una superficie amplia (Fig. 11).

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Orilla Sur Este Inicio del predio

Figura 11. Distribución de árboles cítricos seleccionados para muestrear en una huerta de 5 ha.

En huertas de 10 ha, se deben dividir en dos partes de 5 ha y en cada una seleccionar 20 árboles. En huertas de 8 ha, en cinco de ellas se seleccionan 20 árboles y en las otras tres, 12 árboles. En huertas de 100 ha, se deben dividir en 20 lotes de 5 ha y seleccionar 20 árboles en cada uno. En huertas de mayor superficie, se procede proporcionalmente, sin olvidar que cada huerta sujeta a un muestreo determinado debe tener características homogéneas, de acuerdo a la especie, variedad, edad, nivel de tecnificación, principalmente. 10

Figura 12. Brote para muestreo de huevos, ninfas y adultos de D. citri

Técnicas de Muestreo Se realiza mediante uno o más, de los siguientes métodos: Conteo de huevos, ninfas y adultos en brotes Conteo de adultos capturados en trampas Conteo de adultos mediante golpeteo de ramas Conteo de huevos, ninfas y adultos en brotes Seleccionar brotes o terminales de las ramas en la parte externa de la copa a una altura sobre el piso de 1.2 a 1.7 m, en los 20 árboles previamente escogidos por sitio; los brotes no deben ser mayores a 5 cm de longitud. Se sugiere revisar un brote en cada uno de los 20 árboles, cada 15 días (c/15 d).

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Contar adultos en los brotes seleccionados. Esta actividad se hace en el campo, cuidadosamente, para evitar que los adultos escapen antes de ser contados, c/15 d. Contar huevos y ninfas. Después de contar los adultos, se eliminan los depredadores, y cada brote se corta y se guardan individualmente en una caja de Petri que exhiba una ventana cubierta con malla fina tipo organza sobre la tapa para facilitar la aireación, sin dejar escapar las ninfas (Fig. 13). Etiquetar muestras. Las muestras deben etiquetarse con la fecha de colecta, el número de árbol y el nombre de la huerta; se trasladan al laboratorio para su proceso inmediato, o bien, mantenerlas en refrigeración a 3 °C, hasta la revisión. La revisión de cada brote para contar el número de huevos y ninfas del PAC se hace mediante un microscopio estereoscópico o una lupa 10X. Se puede aprovechar la revisión para contar las ninfas parasitadas por Tamarixia radiata (Waterston), las cuales presentan una coloración café rojiza, y al voltearlas es posible ver en su parte inferior el huevo, la larva o la pupa del parasitoide, o bien se puede observar un orificio circular de la salida de la avispita, en la parte que corresponde al tórax de la ninfa.

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Figura 13. Brote en caja de Petri para conteo de huevos y ninfas de D. citri

Figura 14. Trampa amarilla pegajosa para captura de adultos de D. citri

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Conteo de adultos capturados en trampas

Figura 15. Trampa verde pegajosa para captura de adultos de D. citri

Se usan trampas amarillas pegajosas de 7.5 x 14 cm con pegamento en uno o ambos lados (Fig. 14). A nivel comercial existe una trampa más grande de 14 x 18 cm. Estas trampas o similares se adquieren con proveedores o se elaboran con cartulina. Cuando no se dispone de cartulinas de color amarillo, se pueden usar otras de color verde (Fig. 15) o anaranjado que también atraen a los psílidos. El tamaño y color de las trampas, además de horas de exposición, ubicación, etc., debe ser homogéneo en un ARCO. Se usan 20 trampas por sitio de hasta 5 ha, colocando una en cada uno de los 20 árboles previamente seleccionados (Fig. 11), a una altura de 1.7 m sobre el piso, en la parte sureste. Antes de sujetarlas a las ramas con un alambre galvanizado se impregna el pegamento. 14

Las trampas se etiquetan con el nombre de la localidad, la fecha y el número del árbol; se revisan cada semana, y al mismo tiempo se reemplazan por nuevas. Conteo de adultos: al recoger las trampas se introducen a bolsas de plástico trasparente. El conteo de adultos se puede hacer directamente in situ con una lupa 10X o se trasladan al laboratorio para revisarlas bajo un microscopio estereoscópico. Cuando el número de capturas es demasiado, se revisan los cuadritos (submuestra) de cada trampa, método que se conoce como “el patrón de la cuadrícula de la Universidad de California”. Para el caso de trampas de 14 x 18 cm, los mejores patrones de cuadrículas para las caras A y B de la trampa se presentan en la Fig. 16 al contar sólo los psílidos presentes en los cuadritos de cada patrón como se muestra en la Fig. 17, se estima el número de psílidos capturados en toda la trampa, mediante la siguiente ecuación lineal (Barrera et al., 2011): Y (insectos en la trampa) = 3.0725 x insectos en los cuadritos (submuestra) + 1.3579

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Figura 16. Patrones de cuadrícula en las caras A y B de una trampa amarilla pegajosa, basados en la cuadrícula de la Universidad de California. Se cuentan solamente los psílidos que se encuentren en los cuadritos (submuestras) para estimar la cantidad total de PAC/trampa

Figura 17. El conteo de adultos de D. citri en los cuadritos marcados, permite reducir el tiempo de conteo sin perder eficiencia en la estimación de la población total

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Conteo de adultos mediante golpeteo de ramas Consiste en escoger al azar una rama por cada uno de los 20 árboles previamente seleccionados; la rama sin desprenderla del árbol, se introduce a una bolsa de plástico transparente de 30 x 40 cm (Fig. 18) y se golpea de 5 a 6 veces con un palo de madera (o tubo PVC) para que se desprendan los insectos posados sobre ésta (Fig. 18).

Figura 18. Rama introducida en bolsa de plástico para conteo de adultos de D. citri

Para contar los adultos, la bolsa se retira de la rama, se cierra, se etiqueta con los datos de localidad, fecha y número de árbol, y se lleva a laboratorio para contar los adultos del PAC. Otra manera para contar los adultos: en sustitución de la bolsa de plástico se puede usar una charola de plástico o lámina

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impregnada con algún tipo de aceite para que los psílidos queden adheridos y puedan ser contados sin que escapen (Fig. 19). Mediante esta técnica, en Sonora, cada semana se registra el número acumulado de adultos en 100 brotes o terminales seleccionadas al azar por huerta (JiménezLagunes et al., 2011).

Figura 19. Charola de plástico para contar los adultos de D. citri desprendidos por el golpeteo de la rama

Criterios de Decisión Para estar en condiciones de aplicar los criterios de decisión, bajo cualquier técnica de muestreo utilizada, se necesita calcular el promedio del PAC, dividiendo el total de individuos contados huevos, ninfas y/o adultos, entre el número de brotes o trampas revisadas. Como medida de variación es conveniente calcular el error estándar, mediante una hoja de cálculo de Microsoft Excel con la fórmula: Error 18

estándar = desviación estándar / raíz cuadrada del número de brotes o trampas revisadas. También se sugiere graficar el promedio de psílidos con respecto al tiempo, para identificar los periodos en que la población se incrementa o disminuye. Contar con un registro de la temperatura y la precipitación, la producción de brotes o las actividades de manejo que realiza el productor, facilitarán la explicación de las fluctuaciones poblacionales del PAC. De manera general existen dos criterios para tomar decisiones de manejo del PAC basados en el número de psílidos registrados en el muestreo; estos métodos proporcionan una guía para un uso racional de los insecticidas. Decisiones basadas en brotes poblacionales Decisiones basadas en umbrales de acción. Decisiones basadas en brotes poblacionales. Este criterio de decisión generalmente se utiliza para determinar las épocas más oportunas para eliminar poblaciones del PAC a nivel de ARCOs, y consiste en detectar brotes poblacionales de huevos, ninfas y/o adultos, para suprimirlos inmediatamente aplicando las medidas necesarias, principalmente insecticidas, para evitar que se incrementen. Decisiones basadas en umbrales de acción. Este criterio de decisión se utiliza para un control local, y se necesita conocer el número promedio del PAC para aplicarlo. En el caso de las trampas, se usa como umbral de acción 1 adulto del PAC por trampa por día en promedio. El número de adultos capturados se divide entre el número de días que las trampas permanecieron en el campo. En Sonora, el umbral de acción utilizado es de 5 adultos en 19

100 brotes o terminales mediante la técnica de golpeteo (JiménezLagunes et al., 2011). Bajo cualquiera de las técnicas de muestreo, cuando el número promedio del PAC es igual o mayor que el umbral de acción, se justifica la aplicación de un insecticida para reducir o eliminar la infestación. Cuando el número promedio del PAC no rebasa el umbral, se debe seguir muestreando. En el caso de huertas con HLB, se deben eliminar los árboles infectados y mantener bajas las poblaciones de huevos, ninfas y/o adultos con base en los umbrales de acción antes mencionados, para reducir el inoculo de la enfermedad y evitar su dispersión.

Manejo de Diaphorina citri con insecticidas alternativos en huertas orgánicas y en áreas urbanas Para la producción citrícola orgánica no se autoriza el uso de los plaguicidas convencionales, solamente se permite utilizar un limitado grupo de insecticidas denominados orgánicos o alternativos certificados por el Organic Materials Review Institute (OMRI) y Bioagricert (comercialización y certificación de producciones orgánicas agropecuarias en Europa, Norteamérica, China y Japón), cuya toxicidad aguda letal y residualidad es generalmente menor que la de los insecticidas convencionales. Cuando el HLB se detecta en un huerto orgánico, se pierde su categoría de producción orgánica, y se deberán aplicar insecticidas convencionales para suprimir al PAC.

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Figura 20. Árbol de cítricos de ornato

Figura 21. Planta de limonaria

En árboles de traspatio y en zonas urbanas, el uso de insecticidas alternativos contra el PAC evita efectos colaterales sobre enemigos naturales, animales domésticos y personas. Se sugiere también liberar insectos benéficos como crisopa, que comúnmente se reproduce en laboratorios de cría de insectos benéficos (Cortez et al.,

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2011); los Comités Estatales de Sanidad Vegetal en algunas regiones donde se ejecuta la campaña contra el HLB y su vector, realizan liberaciones de insectos benéficos. Es importante incorporar a la sociedad en general, en el combate del PAC para substituir plantas de cítricos (Fig. 20) y limonaria Murraya paniculata (L.) Jack de ornato (Fig. 21), por otras especies no hospederas del PAC. Grupos de insecticidas alternativos para sistemas de producción orgánica Reguladores del Crecimiento. Su efecto se manifiesta de diversas formas; pueden inhibir la metamorfosis, al evitar que esta se produzca en el momento preciso; o producir una metamorfosis precoz causando que el insecto se desarrolle en una época poco favorable. También pueden alterar la función de las hormonas que regulan estos mecanismos, de modo que se producen insectos con malformaciones, estériles o muertos (Silva et al., 2002). Extractos vegetales. Las plantas suelen responder a estímulos externos a través de la producción de metabolitos secundarios. Algunas de estas sustancias se utilizan como mecanismo de defensa ante ataques de insectos plaga que amenazan la supervivencia de la planta (Corella, 2010). Estas propiedades de las plantas son aprovechadas por el hombre por ser de fuentes naturales, no seleccionar resistencia y tampoco representar problemas por residualidad al momento de la cosecha en la producción agrícola. Los metabolitos secundarios de las plantas se obtienen ya sea por extracción cruda o por aislamiento de compuestos activos. Pueden ser utilizados en mezcla de diversas plantas o de forma individual (Mansour et al., 2011) causando antagonismo de hormonas, inhibición alimentaria, inhibición de oviposición neurotoxicidad, repelencia, entre otros (Pascual, 1996) e incluso la muerte por efecto agudo letal.

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Como ejemplo de extractos vegetales ampliamente utilizados para el control del PAC se encuentran las piretrinas y la azadiractina. Las piretrinas son un grupo de ésteres aislados principalmente de plantas pertenecientes al género Chrysantemum spp., cuyo efecto es neurotóxico de contacto ya que se unen a los canales de sodio de las células neuronales causando su apertura permanente (Yang et al., 2012). Las azadiractinas son extraidas del nim Azadirachta indica Juss, se ha observado que inhiben la alimentación y la oviposición, pero su efecto más importante es interferir con el desarrollo, crecimiento y reproducción de los insectos. No poseen efectos adversos sobre mamíferos y en insectos benéficos, son reducidos. Jabones y Detergentes. Existen en el mercado y pueden ser usados como repelentes, surfactantes y potencializadores. Se aplican contra insectos de cuerpo blando, penetran por los espacios del exoesqueleto ocasionando severa deshidratación, inactividad, y finalmente la muerte. Contra el PAC han causado mortalidad del 80% (Cortez et al., 2011). Sustancias Minerales. Las sustancias minerales utilizadas en la agricultura como insecticidas suelen ser arcillas. El ejemplo más comúnmente usado es el caolín (silicato de aluminio hidratado) formado por la descomposición de feldespato y otros silicatos de aluminio. Actúa como una barrera física previniendo que los insectos alcancen los tejidos vulnerables de la planta además de adherirse a sus cuerpos provocando distracción de la plaga por la continua necesidad de asearse. Es repelente por crear una superficie no apta para la alimentación y oviposición. También puede enmascarar el color verdadero de la planta para aquellos insectos que se guían por este tipo de estímulo. En algunos casos suele ser irritante y en otros, sofocante (Caldwell et al., 2005). La aplicación de estas arcillas es en capas finas, por lo que no interrumpe la fotosíntesis de las plantas.

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Aceites minerales.- Se derivan de la refinación del petróleo, y se utilizan contra insectos de cuerpo blando, principalmente ácaros, escamas, trips, pulgones y psílidos. Aplicados a temperaturas >38 °C y durante la floración pueden provocar toxicidad. Son compatibles con diferentes plaguicidas y propician un efecto sinergista; son de baja toxicidad para insectos depredadores y mamíferos. Su aplicación debe ser muy cuidadosa y con equipo adecuado para garantizar una cobertura total, ya que actúan sólo por contacto. Para evitar riesgos de fitotoxicidad no se deben mezclar con azufre, fertilizantes foliares a base de nitrógeno e insecticidas como dimetoato y carbaryl. Cuando se aplique un aceite mineral después de una aspersión de azufre o viceversa deben transcurrir alrededor de tres semanas. Consideraciones sobre el Uso de Insecticidas Alternativos Los aceite minerales por su modo de acción (asfixia) no seleccionan la resistencia de los insectos y pueden ser usados en mezcla con otros insecticidas para mejorar la efectividad (excepto los mencionados en el párrafo anterior). El riesgo de seleccionar resistencia en insectos, a corto y mediano plazo, es poco probable con insecticidas como la azadiractina o bien, con compuestos secundarios obtenidos del piretro, diversos insecticidas vegetales y entomopatógenos, que poseen más de una sustancia con propiedad insecticida, lo que puede deberse a que es más fácil detoxificar una molécula que un complejo de ellas (Estrada, 1998; Isman, 1999). Plan de rotación de insecticidas alternativos Se presenta un plan de aplicaciones de insecticidas alternativos para el manejo del PAC en huertas orgánicas (Fig. 22); se ilustran con imágenes las etapas de la fenología del cítrico dulce y su relación con la dinámica poblacional del PAC. Las flechas azules y los insecticidas (subrayados) indican las épocas de aplicación regional (ARCO´s) obligatoria para impactar a la población plaga. También se indican opciones de aplicaciones para el resto de los meses (insecticidas sin subrayar). 24

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ub ct

re

Figura 22. Propuesta de rotación de insecticidas alternativos para el manejo del PAC en huertas orgánicas. La programación de aplicación de insecticidas para cada ARCO´s deberá realizarse acorde a la fenología del cultivo, dinámica poblacional, biología del PAC y condiciones ambientales.

Adultos PAC/Trampa

0.4

Aceite Mineral

Manejo de Diaphorina citri con insecticidas convencionales Grupos de insecticidas convencionales para el Control de Diaphorina citri. A continuación se mencionan los grupos químicos de insecticidas, su modo de acción (MA) y se proporciona un listado de aquellos evaluados en diferentes regiones de México y que han mostrado una eficacia mayor al 80% de mortalidad. Insecticidas Piretroides. Desarrollados en la década de los 50's, remplazaron a otros grupos químicos por su efectividad biológica, menor persistencia en el ambiente y mayor seguridad en la aplicación. Son categorizados en generaciones las cuales presentan cada vez mayor eficacia a menores dosis, además de mayor estabilidad en el ambiente; actualmente se tiene la cuarta generación de este grupo. Su mecanismo de acción consiste en alterar el intercambio de iones en el canal de Na y K a nivel del áxon, el insecto expuesto por contacto e ingestión pasa por una intensa agitación, convulsiones, ataxia e hiperactividad y finalmente muere; algunos insectos pueden recuperarse de estas etapas indicando menor susceptibilidad ó resistencia. Insecticidas Neonicotinoides. Desarrollados a inicios de los años 90, han sido ampliamente usados para el control de insectos en la agricultura y ganadería, principalmente contra insectos chupadores como mosca blanca, pulgones, chicharritas y psílidos. Su mecanismo de acción, diferente a la mayoría de los insecticidas orgáno-sintéticos, les ha permitido utilizarse contra insectos resistentes a otros insecticidas. Actúan a nivel del sistema nervioso central bloqueando irreversiblemente los receptores postsinápticos de la acetilcolina, lo cual impide una comunicación entre las neuronas.

26

Insecticidas Fenilpirazoles. De reciente creación; actúan como bloqueadores del ácido gamma aminobutírico, inhibiendo el canal de cloro. Aplicados al follaje y suelo son efectivos contra una diversidad de insectos, incluso contra aquellos que han desarrollado resistencia o tolerancia a piretroides, fosforados y carbamatos. Insecticidas Pirroles. Nuevo grupo de insecticidas que actúan por contacto e ingestión. Se utilizan para el control de mosca blanca, áfidos, minadores, ácaros y larvas de lepidópteros en cultivos bajos y frutales. A nivel fisiológico actúan bloqueando el proceso de respiración mediante un desacoplamiento de la fosforilación oxidativa. En algunas especies de insectos tienen efecto ovicida. Insecticidas Pirazoles. Nuevo grupo de acaricidas de limitada actividad contra mosca blanca, áfidos, trips y psilidos. Actúan por contacto e ingestión. Su mecanismo de acción consiste en interrumpir la formación de Adenosin Trifosfato al inhibir el transporte de electrones en las mitocondrias. Insecticidas Piridazinones. Grupo reciente de insecticidas que actúan por contacto, son compuestos selectivos y actúan principalmente sobre ácaros, chapulines, psílidos y mosca blanca. Se caracterizan por tener un efecto de derribo en las plagas y por su larga residualidad. Inhiben el trasporte de electrones a nivel mitocondrial. Insecticidas derivados de ácidos tetrónicos. Se caracterizan por presentar movimiento acropétalo y basipétalo dentro de la planta, razón por la cual son particularmente efectivos contra insectos chupadores en sus primeras fases de desarrollo. A nivel fisiológico bloquean la acción de la Acetilcoenzima A Carboxilasa, enzima responsable de la síntesis de lípidos.

27

Insecticidas Fosforados. Derivados del ácido fosfórico, es el grupo de insecticidas que más se utiliza en la agricultura mundial, algunos de ellos son considerados de los más tóxicos; tienen un amplio espectro de acción contra insectos y ácaros en hortalizas, frutales y cereales. Son susceptibles a la luz ultravioleta por lo que su persistencia en el ambiente es reducida. Algunos de ellos actúan por contacto e ingestión, otros poseen propiedades sistémicas. Su mecanismo de acción consiste en inhibir la función de la enzima acetilcolinesterasa interrumpiendo la comunicación entre neuronas. Insecticidas Carbamatos. Es un grupo desarrollado a mediados de los 50´s. Se derivan del ácido carbámico y tienen persistencia en el ambiente similar a los organofosforados. Actúan por contacto e ingestión y algunos son sistémicos. Son efectivos contra diversas plagas incluyendo nematodos. A nivel fisiológico actúan como los organofosforados. Insecticidas Oxadiazinas. Las oxadiazinas son una nueva clase de insecticidas que actúan como bloqueadores de los canales de sodio. Surgieron hace una década y se aplican en diferentes cultivos, principalmente frutales para el control de insectos defoliadores. Son de baja toxicidad para mamíferos e insectos depredadores. Insecticidas autorizados en México para el control de Diaphorina citri Actualmente se tienen desarrollados 242 ingredientes activos de insecticidas agrupados por su MA (IRAC 2012, Comité de Acción para el manejo de la Resistencia a Insecticidas:), los cuales se aplican en diferentes cultivos alrededor del mundo. En el Cuadro 1 se muestra la relación de los insecticidas autorizados en México, en cítricos para el control de diferentes especies de plagas, agrupados por modo de acción.

28

Para el manejo del PAC es importante la alternación o rotación de compuestos de diferentes MA en ventanas de aplicaciones (periodos de tiempo) definidas por el estado de desarrollo del cultivo, la dinámica poblacional y biología de la plaga de interés en una región citrícola (ARCOs) (Fig. 23), delimitada por condiciones ambientales relativamente homogéneas. La implementación regional es una de las características de un programa de manejo de la resistencia, dado que las plagas insectiles tienen por lo general, una gran capacidad para dispersarse dentro del agro-ecosistema e intercambiar genes (Rodríguez y Silva, 2003). Es necesario realizar evaluaciones de efectividad biológica y monitoreo de resistencia a insecticidas por ARCO´s, así como utilizar criterios de decisión de acuerdo a los niveles poblacionales del insecto y la detección de HLB.

Figura. 23. Vista de la delimitación de un ARCO.

29

30

Neonicotinoides

Piretroides

Betaciflutrina (SL)

Imidacloprid +

Thametoxam (O)

Imidacloprid (SL)

zetacipermetrina (1) PAC, pulgones mosca blanca PAC, mosca blanca, pulgones, piojo harinoso

Hormiga arriera

PAC

Hormiga arriera

Cipermetrina Bifentrina +

Mosca blanca

Insecto que controla

Bifentrina (1)

Ingredientes activos 2

40-50 ml/100 L de agua

1-3 g/árbol

20-40 g/hormigero

0.7 y 0.2

0.4

0.7

0.05 y 0.2

0.35

15-50 g/planta 600-700 ml/ha

0.05

LMR ppm

400-600 ml/ha

Dosis2

2

Realizado con información de IRAC. Comité de Acción para la Resistencia a Insecticidas. 2012.1 Realizado con información del Catálogo de Plaguicidas Autorizados. Septiembre de 2012. Dirección General de Inocuidad Agroalimentaria Acuícola y Pesquera. 2 Tolerancias de acuerdo a la Agencia de Protección al Ambiente (EPA-siglas en inglés). http://ecfr.gpoaccess.gov/cgi/t/text/textidx?c=ecfr;sid=544a5294795268e3e255f5f2765aec58;rgn=div6;view=text; node=40%3A25.0.1.1.28.5;idno=40;cc=ecfr (Consultado el 24 de octubre de 2012).

1

Agonistas receptor nicotinico de la acetilcolina (4)

Modulador es de los canales de socio (2)

Grupo químico Modo de acción1 (Grupo y subgrupo (Grupo por MA) por MA)

Cuadro 1. Agrupación de insecticidas con base en su modo de acción, autorizados para su uso contra insectos plaga de cítricos en México.

31

Sin limite Araña roja

Aceite parafínico de petróleo

0.5-1.5 L/100 L de agua

Sin limite

1-3 L/100 L de agua PAC, araña roja, escama

Aceite mineral (SL)

Aceite

Sin limite

2-3 L/ha

Gusano perro, minador, PAC

Azadiractina (SL), extracto de aceite de nim

Antagonista de la ecdisoma

1-3 L/ha

PAC, ácaro blanco, piojo harinoso

Extracto de Canela (SL)

Insecticida Botánicos

Sin limite

8

Escamas, trips, pulgón negro, gusanos, piojo harinoso

Malation (7) *

125-300 ml/100 L de agua

2

5 (pulpa seca)

Piojo harinoso, pulgones, 100-200 ml/100 trips, araña roja, L de agua escamas, mosca blanca

0.75-1 L/100 L de agua

ácaros

Clorpirifos etil (34)

0.6

Dimetoato (15)

100-125 ml/100 L de agua

Araña roja

Fenpyroximate (14)

SL: Sin límite; SD: Sin datos. Numero entre paréntesis indica intervalo de seguridad en días. *Insecticida restringido en la producción de aceites esenciales de cítricos.

Insecticidas asfixiantes líquidos (7)

Compuestos de acción desconocida o incierta (6)

Complejo Pirazoles (21A) mitocondrial I inhibidores del METI acaricidas e transporte de insecticidas electrones (5) Bloqueo de la Organofosforados enzima acetilcolinestera (1B) (1)

Insecticidas recomendados contra el PAC en Estados Unidos de América A manera de referencia Rogers et al. (2012; http://edis.ifas.ufl.edu/ in686) de la Universidad de Florida, presentan una relación de insecticidas evaluados contra el PAC en cítricos en Florida (EEUU), efectivos para reducir sus poblaciones: Clorpirifos, Clothianidin (en drench al suelo), Dimetoato, Fenpropathrin, Fosmet, Spinetoram, Spirotetramat, Thiamethoxam (en drench al suelo), Tiamethoxam + Clorantraniliprole, Tiamethoxam + abamectin, Zeta-cypermethrin e Imidacloprid (asperjado y en drench al suelo) con éste último insecticida indican, que para algunas marcas comerciales los datos son incompletos, porque el número de ensayos realizados no fue el requerido. De la relación anterior de insecticidas la Universidad de California (2012; http://www.ipm.ucdavis.edu/PMG/r107 302911.html) incluye todos los insecticidas para el control de insectos plaga en cítricos, con excepción del Clothianidin y en contra parte incluye a la Bifentrina y al Carbaryl, sin embargo, para el PAC sólo especifican a los insecticidas Carbaryl e Imidacloprid. Manejo de la Resistencia de D. citri a Insecticidas Rotación de Insecticidas para el Manejo de la Resistencia del PAC en Áreas Regionales de Control (ARCOs). La resistencia a los insecticidas puede ser definida como “un cambio heredable en la sensibilidad de una población de insectos plaga, que se refleja en la falta de control esperado de un insecticida, cuando se utiliza de acuerdo a la recomendación de la etiqueta, de acuerdo a la especie plaga” (IRAC, 2012). Esta se origina por el uso excesivo o mal uso de un insecticida o acaricida contra una especie plaga y resulta en la selección de individuos resistentes de la plaga, y la consecuente evolución de esta población.

32

La resistencia se puede originar cuando un insecticida elimina a los individuos susceptibles y seleccionan los resistentes, los cuales al reproducirse, eventualmente llegan a ser mayoría en su población y producirán descendientes resistentes. Tipos de Resistencia Resistencia Simple. Se presenta hacia un solo grupo de insecticidas relacionados con el mismo MA. Resistencia Cruzada. Se presenta hacia dos grupos de insecticidas por un mismo mecanismo de resistencia. Resistencia Múltiple. Sucede cuando se selecciona hacia dos o más tipos de insecticidas, por la acción de varios mecanismos de resistencia. Resistencia Cruzada Negativa. Ocurre cuando un mecanismo de resistencia hacia un grupo de insecticidas relacionados le confiere al insecto mayor susceptibilidad hacia otro grupo de insecticidas. Mecanismos que Confieren la Resistencia (Georghiou, 1994) Penetración reducida del tóxico en el cuerpo del insecto. Se debe al desarrollo de barreras cuticulares que impiden o hacen más lento el proceso de penetración. Metabólicos. Por enzimas nuevas o en mayor cantidad. Los insectos utilizan diferentes enzimas para detoxificar al tóxico. Es el mecanismo más común de resistencia. Insensibilidad en el sitio de acción. El lugar donde el tóxico ejerce su efecto está genéticamente modificado, por lo que ignora al tóxico como tal. 33

Por comportamiento del insecto. Generalmente los insectos más susceptibles a un determinado tóxico muestran este mecanismo de resistencia. El insecto al detectar una sustancia insecticida evita entrar en contacto con ésta; pueden detener su alimentación, moverse a áreas en las que no se aplican, ocultarse y protegerse en la misma planta. Por mayor excreción. Los insectos excretan rápidamente las sustancias tóxicas. Por almacenamiento en sitios inactivos en donde no causan efectos tóxicos. Sucede con insecticidas afines a las grasas donde se acumulan y no alcanzan el sitio de acción o llegan en cantidades reducidas. Estos mecanismos pueden presentarse en forma individual (Resistencia Simple o Cruzada) o combinados (Resistencia Múltiple). Criterios para el uso de mezclas de insecticidas. Las mezclas de insecticidas pueden ofrecer una solución a corto plazo a los problemas de resistencia, por dos razones: Por la baja probabilidad de que un organismo de una población, no expuesta antes a insecticidas, posea genes de resistencia para dos o más insecticidas con diferentes modos de acción y diferentes rutas de detoxificación. Por la probabilidad de efectos interactivos entre los componentes de la mezcla, uno de ellos aumentando la toxicidad del otro (sinergismo y potenciación).

34

Para decidir el uso de mezclas insecticidas se debe asegurar que cada insecticida es de diferente MA, que poseen efectividad biológica y que se utilizan en su dosis recomendada (IRAC, 2012). Generalmente, el uso de mezclas insecticidas no es recomendable; sin embargo, se justifican cuando se requiere el control de dos o más especies plaga. Lagunes-Tejeda y Villanueva-Jiménez (1995) indican que al usar mezclas, además se debe considerar que los insecticidas tengan igual proporción de intemperización o vida residual, y que no exista antagonismo o incompatibilidad entre ellos. Plan de rotación de insecticidas convencionales con base en su mecanismo de acción La rotación de insecticidas de diferentes grupos de MA puede desarrollarse para un programa sustentable de manejo de la resistencia a insecticidas (MRI) (Fig. 24), para el control efectivo de insectos y para preservar su utilidad, y diversidad por un tiempo mayor. En este manual se recomienda el MRI para el PAC en áreas regionales de control (ARCO´s).

35

160 140 120

Grupos UN (nim) o REPE (canela)

100 Subgrupo 4A neonicotinoides

80

Grupo ASLIQ (aceite mineral) Purespray

Grupos UN (nim) o REPE (canela)

60

Subgrupo 1B Grupo 3 fosforados Piretroides Bifentrina

40 20

10 5/20 09/0

0 /201 09/0 4

10 3/20 09/0

10 2/20 09/0

09/0 1/20 10

09 2/20 09/1

09 09/1 1/20

09 0/20 09/1

200 9 09/0 9/

09 8/20 09/0

09 7/20 09/0

6/20 0

9

0

09/0

36

Promedio de ninfas/brote

Grupo UN (alcaloides)

Figura 24. Propuesta de rotación de insecticidas para manejar la resistencia del PAC. La programación de aplicación de insecticidas para cada ARCO´s deberá realizarse acorde a la fenología del cultivo (brotación), dinámica poblacional, biología del PAC y condiciones ambientales (ver Cuadro 2). En el caso de los insecticidas neonicotinoides (subgrupo 4A), en árboles de 2.0 m de altura o menos la aplicación se recomienda hacerla al suelo con Thiametoxam (Cuadros 1 y 2), si es posible a través del sistema de riego presurizado. En árboles mayores a los 2 m de altura el insecticida se aplica en aspersión, utilizando el insecticida autorizado (Imidacloprid).

Cuadro 2. Insecticidas autorizados para su uso en cítricos contra el PAC en México (SENASICA, 2012).

37

Nombre de I.A.

Nombre Comercial

Modo de Acción

Dosis

Días Intervalo de Seguridad

Aceite mineral

Purespray/ Foliar 22 E

ASLIQ* (UN**)

1.0-3.0 L/100 L de Agua

SL

Argemonina + Berberina + Ricinina + A-Terthienil

Bio-Die/ biodi/ Progranic/ progreen/ Naturacide/Icametrina /Star/Star/ Agricola/ Ataque/ Ultramyl

UN** (Alcaloides)

1.5-2.0 L/ha

SL

UN**

2.0-3.0 L/Ha

SL

Extracto de aceite de nim clarificado (Azadiractina)

Progranic Nimicide 80/ Ultraneem Ce80/ Pro-Neem Ce80/ Progreen Nemm Ce80/ STAR Agricola Neem Ce80/ Naturacide Neem Ce80/ Ultrachem Neem CE 80/ Star Neem CE 80/ CYR-neem CE 80/ Ultralite Neem CE 80

Extracto de canela

Progranic Cinnacar/ Ultra Canela/ Pro Canela/ Progreen Acar/ Star Acar/ Naturicide Acar/ Ultrachem Acar/ CYR canela/ Bio Acar/ Bio Cinnamon

38

Bifentrina + Hero/ Hero 15% CE / Hero. Zetacipermetrina

REPE*

1.0-3.0 L/ha

SL

Grupo 3**

0.6-0.7 L/ha

1

Imidacloprid + Betacyflutrin

Solomon/ Thunder/ Muralla Max/ Muralla Max 300 OD.

Grupo 4A + Grupo 3**

40-50 ml/100 L de agua

SL

Thiametoxam

Actara 25 GS / Actara 25 WG.

Grupo 4A**

1.0-3.0 g/árbol

0

Insecticidas autorizados por SENASICA, hasta septiembre 2012. I.A. = ingrediente activo. *De acuerdo con Rodríguez y Silva (2003). **De acuerdo a IRAC (2012). SL = sin límite.

Conforme a los resultados de cada aspersión de insecticida y con base a los datos de muestreos de adultos e inmaduros del PAC, la época, número y frecuencia de aplicaciones de insecticidas podrá variar en cada ARCO. Se considera mantener la programación de insecticidas de los grupos señalados en el inicio de las principales brotaciones del año, antes de que las poblaciones del PAC se incrementen, de acuerdo a la especie de cítrico y a la región agrícola. Es recomendable no alternar insecticidas de subgrupos cercanamente relacionados, ni emplear uno del mismo subgrupo más de una ocasión, contra una misma generación del insecto plaga. Muestreos específicos por huerto indicarán la necesidad de realizar aspersiones de insecticidas a ese nivel (local) e incluso en áreas delimitadas dentro de las huertas y corresponderá al grupo técnico contra el HLB-PAC de la región definir el insecticida a utilizar. Recomendaciones para el Uso apropiado de Agroquímicos Calibración de Equipo de Aspersión La calibración del equipo de aspersión, es también una de las partes importantes en el proceso de control de una plaga. Una calibración inadecuada del equipo de aspersión conlleva a varios riesgos: No aplicar la dosis adecuada del agroquímico. No utilizar la cantidad de agua necesaria para cubrir la superficie a aplicar. Resultar en un control ineficiente de la plaga. Es necesario mantener el equipo de aspersión en buenas condiciones y calibrarlo al inicio, y a mediados de la temporada de aplicaciones, o tan frecuentemente como sea necesario. En la calibración del equipo, esencialmente se busca determinar: 1. El gasto total de aspersión, 2. La velocidad de avance real de la aspersora y 3. El desempeño de boquillas, y su correcta orientación. 39

Para una calibración adecuada siga las siguientes recomendaciones: Realice una inspección pre-calibración. Asegúrese de que mangueras y conexiones estén en buen estado, que las boquillas están limpias y que la presión de las llantas de la aspersora sea la correcta. Ajuste el regulador de presión y revise que cada válvula de control esté trabajando bien, que el sistema de agitación esté funcionando adecuadamente y que no existan fugas. Ajuste la corriente de aire. Éste ajuste es necesario para alcanzar toda la superficie de las hojas y asegurar un cubrimiento adecuado al aplicar plaguicidas. Todo el aire dentro del dosel debe ser reemplazado por el proporcionado a través de la corriente de aire de la aspersora. La aspersión pulverizada generalmente requiere muy poco aire, al menos que esté compitiendo con el viento. Cuando el follaje es abundante como en huertos mayores de 10 años, se necesita mayor volumen de aire. La dirección o ángulo de aplicación es igualmente importante. Amarre listones a los cuerpos de las boquillas o deflectores y encienda el aire para conocer su dirección. Ajuste las salidas y deflectores para aportar aire directamente al dosel, y no desperdiciar aspersión por encima y debajo de éste. Apague o desconecte la primer y última boquilla de la línea para optimizar el patrón de aspersión. Confirme la presión de la aspersión. La presión de la línea de las boquillas es usualmente menor que la deseada para la operación. Para disminuir ese error proceda de la siguiente manera: -

Instale un manómetro de presión inmerso en aceite en la última boquilla de la línea. Encienda la aspersión y compare la presión de la línea con la deseada. 40

-

-

-

-

Ajuste el regulador principal hasta obtener la presión deseada en toda la línea. Haga lo mismo con las dos líneas operando al mismo tiempo, si la aspersora está equipada para aplicar por ambos lados. Ajuste la velocidad de avance. La velocidad no debe ser mayor a 5 km/h, siga las siguientes recomendaciones: Mida una distancia de 50 m y marque el inicio, y el final con banderas de señalización. Llene a la mitad el tanque de aspersora (mida el volumen) con agua limpia. Ponga en marcha el tractor mucho antes de la marca de salida hasta alcanzar la velocidad deseada (5 Km/h máximo). Mantenga dicha velocidad constante y cuando llegue a la marca de inicio comience a tomar el tiempo cuando la rueda delantera cruce la bandera de salida. Pare el cronómetro cuando la misma rueda delantera cruce la bandera que marca el final del recorrido. Ejecute dos veces más este procedimiento, cuidando de que cada recorrido bajo tiempo lo haga sin pisar las rodadas anteriores, con el fin de que sean las mismas condiciones de terreno, pero que no se le facilite el recorrido por el suelo aplanado. Determine el promedio del tiempo de recorrido.

Con la información anterior podrá calcular la velocidad de avance mediante la siguiente fórmula (Deveau, 2010): Velocidad de avance (m/seg) =

Distancia recorrida (50m) Tiempo promedio de recorrido (seg.)

41

Calcule el desempeño de la aspersora para cada lado. El cálculo del desempeño de la aspersora se realiza mediante la siguiente fórmula (Deveau, 2010): Desempeño por lado = (L/seg/lado)

Volumen de aspersión hacia el X Velocidad de avance (m/seg) objetivo (L/ha)

X

Ancho de la calle (m)

1220

Para confirmar el adecuado cubrimiento, coloque papeles sensibles al agua en áreas de difícil acceso dentro en el área del dosel. Luego, asperje con agua limpia. Haga correcciones en función de los resultados de la cobertura. Esto se obtiene al contar el número de gotas por cm2. Una buena cobertura para productos sistémicos se estima entre 20-30 gotas/cm2, mientras que para plaguicidas de contacto se requiere de 50-70 gotas/cm2 (Mejía, 2011).

-

-

Mida el cubrimiento real de acuerdo a las siguientes recomendaciones: Ponga la aspersora en un lugar nivelado y llene el tanque hasta la mitad con agua limpia. Encienda la bomba de la aspersora. Ajuste la presión a la usada cuando seleccionó boquillas. Use una manguera para conectar a la boquilla y dirigir el líquido hacia una probeta graduada de 1 L y recolecte durante 1 min. Hágalo para cada boquilla. Compare el gasto real de la boquilla con el del catálogo del proveedor. Remplace cualquier boquilla que varíe tanto por encima como por debajo del indicado en el catálogo en una proporción del 10%. Lo ideal es que no varíe en un 5%, pero 10 es aceptable. 42

-

Calcule el gasto total de la línea de boquillas completa y compare con lo requerido para cubrir adecuadamente el dosel de cada árbol en la huerta donde se están haciendo las pruebas y ajustes.

Como se puede apreciar, son diferentes variables que pueden afectar una cobertura adecuada, y consecuentemente, el éxito de un programa de aplicaciones de plaguicidas. En ocasiones no son las fechas de aplicación ni los productos los que fallan en una aplicación, sino el equipo y el operador. Cuando no se realizan los ajustes que deben hacerse, el costo puede verse incrementado por la necesidad de realizar más aplicaciones de las necesarias por un cubrimiento inicial deficiente. Cuando ya se han hecho calibraciones en ocasiones anteriores para un equipo y huerta en particular, se pueden obviar algunos pasos y solamente revisar boquillas, y diagnosticar el cubrimiento con papel sensible, pero no hay que dejar pasar mucho tiempo antes de llevar a cabo una nueva calibración. Dosificación de Insecticidas de Acuerdo al Tamaño de Árboles Rogers et al. (2012; http://edis.ifas.ufl.edu/in686) señalan que debido a que la dosis recomendada de cada insecticida por hectárea, en la etiqueta, es la requerida para tratar árboles cítricos completamente desarrollados, a menos que se indique lo contrario, la cantidad de insecticida que se necesita en árboles de menor desarrollo también es menor. Para utilizar una cantidad adecuada de insecticida en árboles más chicos, recomiendan, diluir la dosis recomendada del insecticida por hectárea en la cantidad de agua necesaria para aplicar dicha superficie (en árboles completamente desarrollados) y entonces, se asperja la superficie para la que alcance la solución; entre menor sea el tamaño de los árboles mayor será la superficie que se cubra con la aspersión. Es requisito saber cuánta agua gasta el equipo de aspersión en una ha de árboles completamente desarrollados. 43

Otra forma, más elaborada, pero práctica para determinar la dosis de insecticida y la cantidad de agua a asperjar es mediante el cálculo del volumen de la copa de los árboles (Rüegg y Olivier, 2004). Para determinar el volumen de follaje/ha y subsecuentemente la dosis a aplicar en cualquier huerta, se considera el siguiente modelo que determina el volumen de aspersión: Volumen (m3)de follaje = 10,000 m2/distancia entre hileras de árboles x Altura del árbol x Ancho del árbol. Los siguientes cálculos hipotéticos se basan en aplicar 2000 L/ha de la mezcla insecticida (1 L/ha)+agua, en árboles con 37,500 m3 de follaje; mayor volumen de follaje implica el aumento de la cantidad de agua + insecticida y viceversa. Es necesario considerar que para un cálculo correcto, se debe constatar el tamaño del árbol en el que se hizo la evaluación original de un plaguicida, sin embargo, como se mencionó antes, la dosis de los insecticidas recomendados es la requerida para árboles completamente desarrollados. Calculo para Árboles Grandes: Plantación: 8 m entre hileras de árboles, 6 m ancho del árbol, 5 m altura del árbol. 10,000 m2 x 6 x 5 8

=

37,000 m3 de follaje

Si la dosis del insecticida a utilizar es de 1,000 ml (1 L) y 2,000 L de agua/ha, esto equivale a aplicar 0.5 ml/L de agua en 37,500 m3 de follaje. Calculo para Árboles Medianos: Plantación: 8 m entre hileras de árboles, 4 m ancho del árbol, 4 m altura del árbol. 44

10,000 m2 x 4 x 4 8

=

20,000 m3 de follaje

Cantidad de agua necesaria para 20,000 m3 de follaje: 37,500 – 2000 L agua 20,000 x = 1066 L agua Cantidad de insecticida necesario para 20,000 m3 de follaje: 37,500 – 1000 ml insecticida (1 L) 20,000 x = 533 ml Aplicar 533 ml de insecticida en 1066 L de agua equivale a aplicar 0.5 ml/L de agua en 20,000 m3 de follaje, es decir, la misma concentración de insecticida. Calculo para Árboles Pequeños: Plantación: 8 m entre hileras de árboles, 3 m ancho del árbol, 3 m altura del árbol. 10,000 m2 x 3 x 3 8

=

11,250 m3 de follaje

Cantidad de agua necesaria para 11,250 m3 de follaje: 37,500 – 2000 L agua 11,250 x

= 600 L agua

Cantidad de insecticida necesario para 11,250 m3 de follaje: 37,500 – 1000 ml insecticida (1 L) 11,250 x = 300 ml

45

Aplicar 300 ml de insecticida en 600 L de agua equivale a aplicar 0.5 ml/L de agua en 11,250 m3 de follaje. Con éste procedimiento también es requisito previo conocer la cantidad de agua que se asperja en una ha, con un equipo de aspersión determinado, pero una vez realizado el cálculo de volumen de follaje en árboles grandes (completamente desarrollados), los siguientes cálculos se realizan mediante una regla de tres simple para calcular la cantidad de agua y de insecticida por ha. Cuando la recomendación del insecticida está indicada por litro o litros de agua (en concentración) y no por ha (superficie), es necesario conocer el gasto de agua por ha del equipo con el que se determinó la dosis, pues diferentes equipos de aspersión tienen diferente eficacia en el uso del agua, pero dicho gasto de agua generalmente no se indica en la etiqueta. No obstante, por lo general los equipos tradicionales de aspersión de insecticidas gastan alrededor de los 2,000 L de agua, como se indica en el ejemplo hipotético. Técnicas de Aplicación Respetar las épocas recomendadas de control, y la estrategia de manejo regional del insecto. Efectuar aplicaciones que aseguren cobertura total y uniforme en el menor intervalo de tiempo posible. Utilizar insecticidas que no estén caducos, en sus dosis y métodos de aplicación recomendados. Cuando se realicen mezclas de insecticidas, fungicidas y fertilizantes foliares, asegurarse de la compatibilidad de los productos, para evitar efectos adversos al cultivo. Evitar realizar aplicaciones bajo condiciones de lluvias y vientos >15 Km/h. Algunos insecticidas pueden causar fitotoxicidad si son aplicados bajo temperaturas extremas ej: 46

el azufre causa daños a los frutos cuando la temperatura ambiente excede los 34 °C y el aceite mineral los 38 °C. Las aplicaciones con equipo manual se deben realizar en parcelas pequeñas. En aspersiones aéreas, son convenientes las aplicaciones a ultrabajo volumen. En aspersiones de insecticidas se ha observado que el PAC, así como otros insectos como mosca blanca, abandonan temporalmente la huerta cuando es asperjada, por tal motivo se sugiere anillar primero (por los márgenes), esto es especialmente práctico si la aplicación es aérea. Ajustar el pH del agua a las características del producto a asperjar como se indica en la etiqueta de información técnica del plaguicida. La aspersión terrestre de insecticidas realizarla con equipo nebulizador (cañón) para que el insecticida se deposite lentamente en el follaje. Con este equipo el agua requerida por superficie asperjada es menor. Las aspersiones aéreas se recomiendan realizarlas en un periodo corto de tiempo a nivel de ARCO´s. La aplicación de insecticidas sistémicos, en árboles hasta 4.0 m de altura, deberá hacerse considerando el tiempo que requiere el insecticida para trasladarse al lugar donde se ubica la plaga (imidacloprid por ej., tarda de una a dos semanas Grafton-Cardwell, 2012). Es importante asegurar la humedad adecuada en el suelo para facilitar el movimiento del producto hacia los sitios de la plaga. En casos de aspersión de insecticidas entomopatógenos, realizarla cuando las condiciones de humedad relativa sean del 80% o mayores, por la tarde o muy temprano en la mañana. 47

La seguridad en el uso de plaguicidas Los plaguicidas son nocivos para el aplicador y otras personas, así como para animales, cercanos al área de aplicación. Es imprescindible incrementar las medidas de seguridad para evitar riesgos con el uso de tóxicos, mediante las siguientes recomendaciones: Extremar precauciones cuando se manipulen plaguicidas. Es conveniente disponer siempre de agua limpia en abundancia, jabón, toallas limpias, copa para limpieza de ojos y antídotos adecuados cuando sea factible. Después de la aspersión, es necesario bañarse, cambiarse de ropa y avisar a la persona encargada de lavar las prendas que dichas piezas podrían contener residuos del tóxico. Usar equipo de protección (Fig. 24): mascarillas con filtros para plaguicidas, guantes de plástico, overoles, lentes, gorros, y zapatos cerrados. Adoptar las precauciones generales indicadas en la etiqueta de información técnica del plaguicida. Es importante conocer el intervalo de reentrada de personal a un huerto asperjado con insecticida y el de intervalo de seguridad a la cosecha. Evitar el contacto repetido o prolongado de plaguicidas con la piel, así como la inhalación de polvos, vapores o neblinas de los agroquímicos . Avisar a los vecinos de la aspersión y del producto a utilizar; realizar la aplicación del producto en momentos de calma para así reducir su deriva y posible exposición de personas al tóxico. En caso de cualquier malestar, por leve que sea, acudir inmediatamente al médico, llevar la etiqueta del producto aplicado o al menos el nombre del ingrediente activo del

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plaguicida para así recibir el tratamiento clínico apropiado lo antes posible. Es conveniente asegurarse de dar mantenimiento al equipo de aspersión (boquillas, mangueras, etc.) antes y después de su empleo para evitar derrames, y posible contacto o exposición al plaguicida. Los agroquímicos deben de conservarse y almacenarse en recipientes cerrados, en lugares seguros y secos, y donde no contaminen los alimentos o forrajes. Evite comprar productos para almacenar, permita que el distribuidor de plaguicidas asuma esta función. Evite desechar los envases vacíos de los productos plaguicidas, utilizados. Fabricantes y distribuidores de agroquímicos cuentan con programas y áreas específicas para recibir estos desechos y contribuir a evitar la contaminación del medio, o bien a través de los programas de “Campo limpio”.

Figura 24. Persona usando el equipo adecuado de protección, para aplicar agroquímicos

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Agradecimientos A SAGARPA-CONACYT por el financiamiento del proyecto “2009108591 “Manejo de la Enfermedad Huanglongbing (HLB) Mediante el Control de Poblaciones del Vector Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae), el Psílido Asiático de los Cítricos”. Los autores agradecen las observaciones, sugerencias y comentarios de diferentes técnicos de los Comités Estatales de Sanidad Vegetal en las zonas citrícolas del país. También se aprecia sobremanera la colaboración del Ing. Héctor Sánchez Anguiano y el M.T. Pedro L. Robles García (SENASICA-DGSV) para lograr lo anterior. Literatura Citada Alemán, J., H. Baños y J. Ravelo. 2007. Diaphorina citri y la enfermedad Huanglongbing: Una combinación destructiva para la producción citrícola. Revista de Protección Vegetal. Vol 22 Num. 3 Versión On-line ISSN 2247-0149. Barrera, J. F., J. Herrera, F. Vázquez, M. Hernández, J. Gómez y J. Valle. 2011. Estudios sobre trampeo de Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae), p. 30-40. En: 2º Simposio Nacional sobre Investigación para el Manejo del Psílido Asiático de los Cítricos y el Huanglongbing en México, 5 y 6 de diciembre de 2011, Montecillo, Estado de México, México. CAB International. 2005. Crop Protection Compendium. Wallingford, UK: CAB International. 6 p. Cabrera-Mireles, H. F. D. Murillo-Cuevas, J. A. Villanueva-Jiménez, A. L. Montero-Morales, J. Cruz-Bustos, y L. Aguilar-Román. 2011. Fluctuación poblacional de Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae) en limón persa en Cotaxtla y Cuitláhuac, Veracruz, México. In: López-Arroyo, J. I., González-Lauck, V. W. (Comp.). Memoria: 2.do. Simposio Nacional sobre Investigación para el Manejo del Psílido Asiático de los Cítricos y el Huanglongbing en

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Centros Nacionales de Investigación Disciplinaria, Centros de Investigación Regional y Campos Experimentales NORTE CENTRO

1

7 Sierra de Chihuahua 8 Delicias 9 Valle de Guadiana 10 La Laguna 11 Zacatecas 12 Pabellón

3

NORESTE 13 Saltillo 14 Río Bravo 15 General Terán 16 Las Huastecas 17 San Luis

4 GOLFO CENTRO RASPA

NOROESTE

30 San Martinito 31 Cotaxtla 32 La Posta 33 Ixtacuaco 34 El Palmar 35 Huimanguillo

SURESTE 36 Edzná 37 Ixtacuaco 38 Chetumal

1 Valle de Mexicali 2 Todos Santos 3 Costa de Hermosillo 4. Valle del Yaqui 5 Valle del Fuerte 6 Valle de Culiacán

PACÍFICO CENTRO 18 Santiago Ixcuintla 19 Centro - Altos 20 Tecomán 21 Valle de Apatzingán 22 Uruapan

PACÍFICO SUR CENTRO 23 Centro 24 Valle de México

25 Zacatepec 26 Iguala 27 Valles Centrales 28 Centro de Chiapas 29 Rosario Izapa

Sede de Centro de Investigación Regional Centro Nacional de Investigación Disciplinaria Campo Experimental

Esta publicación se terminó de imprimir en mayo de 2013, en City Pixel, Sierra Tarahumara No. 911, Col. Las Puentes, San Nicolás de los Garza, N. L. Tel. (81) 8351-49-23, C.P. 66460. [email protected]. Su tiraje fue de 1000 ejemplares.

La serie de Folletos Técnicos está integrada por publicaciones cuyo objetivo es presentar información sobre los cultivos en los cuales el INIFAP-CIRNOCEVAF, realiza investigación, esto, con el fin de actualizar a los agentes de cambio y líderes de opinión de modo que puedan prestar una asistencia técnica actualizada y adecuada a las necesidades de los productores agrícolas del estado de Sinaloa.

CAMPO EXPERIMENTAL VALLE DEL FUERTE SAGARPA-INIFAP-CIRNO Km. 1609 Carretera Internacional México-Nogales Apartado postal 342, Los Mochis, Sinaloa, México. Teléfonos (01 687) 8960320 y 8960321; Fax: (01 687) 8960212 Correo electrónico: [email protected]

En el proceso editorial de la presente publicación participaron las siguientes personas:

COMITÉ EDITORIAL DEL CEVAF

Coordinador de la publicación

M.C. Franklin G. Rodríguez Cota Presidente

M.C. Franklin G. Rodríguez Cota Dr. Edgardo Cortez Mondaca

M.C. Jaime Macías Cervantes Secretario

Impresión y acabado

M.C. Rafael A. Salinas Pérez Dr. Edgardo Cortez Mondaca M.C. Ernesto Sifuentes Ibarra Vocales

Comité Editorial del Campo Experimental Valle del Fuerte

La impresión de esta publicación y la información contenida en ésta, fue posible debido al apoyo económico otorgado al INIFAP, durante el proceso de investigación por: SAGARPA-CONACYT

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